Preview

Овощи России

Расширенный поиск

Антиоксидантный статус бриофитов Самаровского Чугаса (Югра) и ростостимулирующий эффект их водных экстрактов

https://doi.org/10.18619/2072-9146-2026-2-126-133

Аннотация

Актуальность. Несмотря на значительное содержание биологически активных соединений, высокую адаптационную способность и положительное действие на здоровье человека мхи до сих пор не использовали в растениеводстве в качестве стимулторов роста.

Материал и методика. Целью настоящей работы была оценка антиоксидантного статуса 7 видов мхов Югры и установление возможности использования их водных экстрактов в качестве стимуляторов получения проростков редиса.

Результаты. Общая антиоксидантная активность (AOA) и содержание полифенолов (TP) установленные методами визуального титрования и Фолина-Чиокалтеу соответственно составили интервалы 14.6-30.4 и 8.7-24.4 мг-экв ГК/г с.м. с более высокими показателями, характерными для района Миснэ Ханты-Мансийска и более низкими для пригорода (Шапша) и Уксовского родника, по сравнению с высокими уровнями АОА и ТР Pleurotium sсhreberi Северной Карелии и Владимира. Установлена прямая корреляция между AOA и TP всех исследованных видов мхов Самаровского Чугаса (r=0,843), а также между уровнями АОА и содержанием пролина (0,936). Водные экстракты (0,02%) пяти видов мхов из 7 предпочтительно стимулировали рост корней редиса с наибольшим положительным эффектом, характерным для Sphagnum russowi и Callieregonella lindbegii и наименьшим для Pleurozium schreberi.

Об авторах

Н. A. Голубкина
Федеральное государственное бюджетное научное\ учреждение «Федеральный научный центр овощеводства» (ФГБНУ ФНЦО)
Россия

Надежда Александровна Голубкина доктор с.-х. наук, главный научный сотрудник лабораторно-аналитического отдела

143072, Московская область, Одинцовский район, п. ВНИИССОК, Селекционная, д. 14 



У. Д. Плотникова
Государственный геолого-разведочный университет им. Серго Орджоникидзе,
Россия

Ульяна Дмитриевна Плотникова студентка 3 курса экологического факультета

117485, Москва 



В. Э. Федосов
Московский государственный университет им М.В. Ломоносова,
Россия

Владимир Эрнстович Федосов доктор биол. наук, ведущий научный сотрудник, кафедра экологии и биохимии растений

119991, Москва, Ленинские горы, 1

Scopus ID: 55856047600



С. С. Шешницан
ФГБОУ ВО Воронежский государственный лесотехнический университет им. Г.Ф. Морозова
Россия

Сергей Сергеевич Шешницан кандидат биол. наук, доцент, лесной факультет, кафедра ландшафтной архитектуры и почвоведения

394087, г. Воронеж, ул. Тимирязева, 8



В. А. Харченко
Федеральное государственное бюджетное научное\ учреждение «Федеральный научный центр овощеводства» (ФГБНУ ФНЦО)
Россия

Виктор Александрович Харченко кандидат с.-х. наук, зав. лаб. селекции и семеноводства зеленных, пряно-вкусовых и цветочных культур

143072, Московская область, Одинцовский район, п. ВНИИССОК, Селекционная, д. 14 



Н. Н. Рыбьякова
Национальный парк «Самаровский Чугас»
Россия

Надежда Николаевна Рыбьякова начальник научно-методического отдела

Ханты-Мансийск



Список литературы

1. Tiloca G., Brundu G., Ballesteros D. Bryophyte Spores Tolerate High Desiccation Levels and Exposure to Cryogenic Temperatures but Contain Storage Lipids and Chlorophyll: Understanding the Essential Traits Needed for the Creation of Bryophyte Spore Banks. Plants. 2022;(11):1262. https://doi.org/10.3390/plants11091262

2. Wang X., Liu Z., He Y. Responses and tolerance to salt stress in bryophytes Plant Signal. Behav. 2008;3(8):516-518.

3. de León I.P., Montesano M. Adaptation Mechanisms in the Evolution of Moss Defenses to Microbes. Front. Plant Sci. 2017;(8):366. https://doi.org/10.3389/fpls.2017.00366

4. Sabovljević M.S., Sabovljević A.D., Grubisic D. Gibberellin influence on the morphogenesis of the moss Bryum argenteum Hedw. in in vitro conditions. Arch. Biol. Sci. 2010;62(2):373-380.

5. Heim A., Lundholm J., Philip L. The impact of mosses on the growth of neighbouring vascular plants, substrate temperature and evapotranspiration on an extensive green roof Urban Ecosyst. 2014;(17):1119-1133. https://doi.org/10.1007/s11252-014-0367-y

6. Stanković J.D., Sabovljević A.D., Sabovljević M.S. Bryophytes and heavy metals: a review Acta Bot. Croat. 2018;77(2):109-118. https://doi.org/10.2478/botcro-2018-0014

7. Schmidt B., Kegler F., Steinhauser G. Chyzhevskyi I., Dubchak S., Ivesic C., Koller-Peroutka M., Laarouchi A., Adlassnig W. Uptake of Radionuclides by Bryophytes in the Chornobyl Exclusion Zone. Toxics. 2023;(11):218. https://doi.org/10.3390/toxics11030218

8. Provenzano F., Sánchez J., Rao E., Santonocito R., Ditta L., Linares I. et al. Water extract of Cryphaea heteromalla (Hedw.) D. Mohr bryophyte as a natural powerful source of biologically active compounds. International Journal of Molecular Sciences. 2019;20(22):5560. https://doi.org/10.3390/ijms20225560

9. Frahm J.-P., Kirchhoff K. Antifeeding effects of bryophyte extracts from Neckera crispa and Porella obtusata against the slug Arion lusitanicus. Cryptogamie Bryologie. 2002;23(3):271-275.

10. Blazquez M., Nelson D., Weijers D. Evolution of plant hormone response pathways. Annu. Rev. Plant Biology. 2020;71(1):327-353. https://doi.org/10.1146/annurevarplant-050718-100309

11. Sabovljević M., Vujičić M., Sabovljević A. Plant growth regulators in bryophytes. Botanica Serbica. 2014;38(1):99-107.

12. Harris E.S. Ethnobryology: Traditional uses and folk classification of bryophytes. The Bryologist. 2008;111(2):169-217. https://doi.org/10.1639/0007-2745(2008)111

13. Chandra S., Chandra D., Barh A., Pandey R.K., Sharma I.P. Bryophytes: Hoard of remedies, an ethno-medicinal review. J. Trad. Complement. Med. 2016;7(1):94-98. https://doi.org/10.1016/j.jtcme.2016.01.007

14. Drobnik J., Stebel A. Four centuries of medicinal mosses and liverworts in European ethnopharmacy and scientific pharmacy: A review. Plants. 2021;(10: 1296.

15. Drobnik J., Stebel A. Tangled history of the European uses of Sphagnum moss and sphagnol. J. Ethnopharmacol. 2017;(209(1):41- 49. https://doi.org/10.1016/j.jep.2017.07.025

16. Vollar M., Gyovai A., Szűcs P., Zupkó I., Marschall M., CsuporLöffler B., Csupor D. Antiproliferative and antimicrobial activities of selected bryophytes. Molecules. 2018;23(7):1520.

17. Kulshrestha S., Jibran R., van Klink J.W., Zhou Y., Brummell D.A., Albert N.W., Schwinn K.E., Chagné D., Landi M., Bowmanevin J.L., Davies M. Stress, senescence, and specialized metabolites in Bryophytes. J. Exp. Bot. 2022;73(13):4396-4411. https://doi.org/10.1093/jxb/erac085

18. Xiao L., Zhang W., Hu P., Zhao J., Wang K. Effect of moss removal on soil multifunctionality during vegetation restoration in subtropical ecosystems. Applied Soil Ecology 2024;(194):105170. https://doi.org/10.1016/j.apsoil.2023.105170

19. Huneck S., Meinunger L. Plant growth regulatory activities of bryophytes: A contribution to the chemical ecology of mosses and liverworts. In Zinsmeister H.D., Mues R. (Eds.), Bryophytes, their chemistry and chemical taxonomy. 1990. pp. 289-298.

20. Stuiver B.M., Wardle D.A., Gundale M.J., Nilsson M.-C. The Impact of Moss Species and Biomass on the Growth of Pinus sylvestris Tree Seedlings at Different Precipitation Frequencies Forests. 2014;(5):1931-1951. https://doi.org/10.3390/f5081931

21. Shah S.A.H., Ali R. Investigating the Growth-Promoting Potential of Bryophyte Extracts from Bryum argenteum, Fissidens dubius, and Plagiochasma appendiculatum on Wheat (Triticum aestivum L.): Implications for Sustainable Agricultural Practices. Int. J. Agric. Appl.Sci. 2025;6(1):40-51. https://doi.org/10.52804/ijaas2025.617

22. Godlewska K., Ronga D., Michalak I. Plant extracts - importance in sustainable agriculture. Ital. J. Agron. 2021;(16):1851.

23. Han M., Kasim S., Yang Z., Deng X., Saidi N.B, Uddin M.K., Shuib E.M. Plant Extracts as Biostimulant Agents: A Promising Strategy for Managing Environmental Stress in Sustainable Agriculture. Phyton Int.J.Exp.Bot. 2024;93(9):2149-2166.

24. Ignatov M.S., Ignatova E.A., Fedosov V.E., Chernyadyeva I.V., Afonina O.M., Maximov A.I., Kuchera J., Akatova T.V., Doroshina G.J. Moss flora of Russia. 2020, Vol 5. Hypopterygiales – Hypnales (Plagiotheciaceae – Brachytheciaceae). Moscow: Scientific Publishing Partnership KMK. 600 p.

25. Ignatov M.S., Ignatova E.A., Fedosov V.E., Afonina O.M., Chernyadyeva I.V., Khedenas L., Cherdantseva V.J. 2022. Moss flora of Russia. 2022, Vol. 6. Hypnales (Calliergonaceae – Amblystegiaceae). Moscow: Scientific Publishing Partnership KMK. 472 p.

26. Ignatov M.S., Ignatova E.A., Fedosov V.E., Tubanova D.J., Chernyadyeva I.V., Afonina O.M., Belkina O.A., Pisarenko O.J. Moss flora of Russia. 2025, Vol.3. Dicranales. Moscow: Scientific Publishing Partnership KMK. 687 p.

27. Ignatov M.S., Ignatova E.A., Fedosov V.E., Zolotov V.I., Koponen T., Chernyadyeva I.V., Doroshina G.J., Tubanova D.J., Bell N.E. Moss flora of Russia. 2018, Vol. 4. Bartramiales – Aulacomniales. Moscow: Scientific Publishing Partnership KMK. 543 p.

28. Ignatov M.S., Ignatova E.A., Fedosov V.E., Ivanova E.I., Blom Kh.Kh., Munios I., Bednarek-Okhira Kh., Afonina O.M., Kurbatova L.E., Chernyadyeva I.V., Cherdantseva V.J. Moss flora of Russia. 2017, Vol. 2. Oedipodiales – Grimmiales. Moscow: Scientific Publishing Partnership KMK. 560 p.

29. Golubkina N.A., Kekina H.G., Molchanova A.V., Anthoshkina M.S., Nadezhkin S.M., Soldatenko A.V. Plant antioxidants and methods of their determination. 2020. (in Russ.)

30. Ábrahám E., Hourton-Cabassa C., Erdei L., Szabados L. Methods for determination of proline in plants. Chapter 20. In Plant Stress Tolerance. Methods in Molecular Biology (Methods and Protocols); Sunkar, R., Ed.; Humana Press: Totowa, NJ, USA, 2010;(639):317-331.

31. Rao M.J., Duan M., Zhou C., Jiao J., Cheng P., Yang L., Wei W., Shen Q., Ji P., Yang Y. et al. Antioxidant Defense System in Plants: Reactive Oxygen Species Production, Signaling, and Scavenging During Abiotic Stress-Induced Oxidative Damage. Horticulturae. 2025;(11):477. https://doi.org/10.3390/horticulturae11050477

32. Glime J.M. Roles of Bryophytes in Forest Sustainability —Positive or Negative? Sustainability. 2024;(16):2359. https://doi.org/10.3390/su16062359

33. Aslanbaba B., Yilmaz S., Tonguc-Yayinta Ö. Total phenol content and antioxidant activity of mosses from Yenice forest (Ida mountain). J. Sci. Perspect. 2017;(1):1-12. https://doi.org/10.26900/jsp.2017.0

34. Golubkina N., Sheshnitsan S., Koshevarov A., Pirogov N., Plotnikova U., Tallarita A.V., Murariu O.C., Merlino L., Caruso G. Peculiarities of Plant Mineral Composition in Semi-Desert Conditions. Int. J. Plant Biol. 2024;(15):1229-1249. https://doi.org/10.3390/ijpb15040085

35. Golubkina N., Tolpysheva T., Lapchenko V., Lapchenko H., Pirogov N., Zaitsev V., Sękara A., Tallarita A., Stoleru V., Murariu O.C., Caruso G. Comparative Evaluation of Antioxidant Status and Mineral Composition of Diploschistes ocellatus, Calvatia candida (rostk.) Hollós, Battarrea phalloides and Artemisia lerchiana in Conditions of High Soil Salinity. Plants. 2023;12(13):2530. https://doi.org/10.3390/plants12132530

36. Golubkina N., Skrypnik L., Logvinenko L., Zayachkovsky V., Smirnova A., Krivenkov L., Romanov V., Kharchenko V., Poluboyarinov P., Sekara A., Caruso G. The ‘Edge Effect’ Phenomenon in Plants: Morphological, Biochemical and Mineral Characteristics of Border Tissues. Diversity. 2023;(15):123. https://doi.org/10.3390/d15010123.

37. Golubkina N., Plotnikova U., Koshevarov A., Sosna E., Hlebosolova O., Polikarpova N., Murariu O.C., Tallarita A.V., Caruso G. Nickel, Cu, Fe, Zn, and Se Accumulation, and the Antioxidant Status of Mushrooms Grown in the Arctic Under Ni/Cu Pollution and in Unpolluted Areas. Stresses. 2025;(5):25. https://doi.org/10.3390/stresses5020025

38. Hayat S., Hayat Q., Alyemeni M.N., Wani A.S., Pichtel J., Ahmad A. Role of proline under changing environments: a review. Plant Signal Behav. 2012;7(11):1456-466. https://doi.org/10.4161/psb.21949

39. Liang X., Zhang L., Natarajan S.K., Becker D.F. Proline mechanisms of stress survival. Antioxid Redox Signal. 2013;19(9):998-1011. https://doi.org/10.1089/ars.2012.5074

40. Mattioli R., Costantino P., Trovato M. Proline accumulation in plants: not only stress. Plant Signal Behav. 2009;4(11):1016-1018. https://doi.org/10.4161/psb.4.11.9797

41. Bhavanam S., Stout M.J.Seed Treatment With Jasmonic Acid and Methyl Jasmonate Induces Resistance to Insects but Reduces Plant Growth and Yield in Rice, Oryza sativa Front. Plant Sci. 2021;(12):91768. https://doi.org/10.3389/fpls.2021.691768

42. Pouliot R., Rochefort L., Karofeld E., Mercier C. Initiation of Sphagnum moss hummocks in bogs and the presence of vascular plants: Is there a link? Acta Oecologica. 2011;37(4):346-354. https://doi.org/10.1016/j.actao.2011.04.001


Рецензия

Для цитирования:


Голубкина Н.A., Плотникова У.Д., Федосов В.Э., Шешницан С.С., Харченко В.А., Рыбьякова Н.Н. Антиоксидантный статус бриофитов Самаровского Чугаса (Югра) и ростостимулирующий эффект их водных экстрактов. Овощи России. 2026;(2):126-133. https://doi.org/10.18619/2072-9146-2026-2-126-133

For citation:


Golubkina N.A., Plotnikova U.D., Fedosov V.E., Sheshnitsan S.S., Kharchenko V.A., Ribyakova N.N. Antioxidant status of Samarovski Chugas (Jugra) bryophytes and growth promoting activity of their water extracts. Vegetable crops of Russia. 2026;(2):126-133. https://doi.org/10.18619/2072-9146-2026-2-126-133

Просмотров: 151

JATS XML


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2072-9146 (Print)
ISSN 2618-7132 (Online)