Некоторые особенности чашелистиков и плодоножек шиповника как перспективного лекарственного сырья

Актуальность. При промышленной обработке плодов шиповника по требованиям норматив­ной документации чашелистики и плодоножки отделяют и отбрасывают. Согласно принципу комплексного использования лекарственного растительного сырья, представляется перспек­тивным их изучение. Цель исследования рассмотрение некоторых фармакогностических и фитохимических характеристик чашелистиков с плодоножками в сравнительном аспекте с гипантиями видов: Rosa majalis Herrm., Rosa rugosa Thunb., Rosa acicularis Lindl., Rosa mollis Smith. Также изучали чашелистики с плодоножками отходы промышленных партий плодов шиповника.

Материалы и методы. Определяли гравиметрическим методом: массовую долю чашелистиков в цинародии, динамику усушки, содержание сухого вещества, влажность. Титриметрическим методом: содержание аскорбиновой кислоты, моносахаридов, суммарное содержание анти­оксидантов в спиртовом экстракте, суммарное содержание водорастворимых антиоксидан­тов. Спектрофотометрическим методом: содержание полифенольных соединений. Статистические расчеты проводили в программе Microsoft Excel по критериям Стьюдента и Фишера, критический уровень значимости принимали равным 0,05.

Результаты. Выявлено, что цинародии высыхали в 7,2 раза дольше чашелистиков с плодо­ножками. Коэффициент усушки чашелистиков был ниже, чем цинародиев, в среднем в 1,68 раза. Влажность гипантиев и чашелистиков по видам не различалась. Влажность чашелисти­ков была в среднем в 2,2 раза выше, чем гипантиев. Максимальное суммарное содержание водорастворимых антиоксидантов было выявлено в чашелистиках и гипантиях R. majalis: 111,85 и 88,62 мг-экв. аскорбиновой кислоты/г; антиоксидантов в спиртовом экстракте в сред­нем в чашелистиках R. majalis и R. rugosa 68,26 и 73,76 мг-экв. галловой кислоты/г соответ­ственно. Наибольшее накопление аскорбиновой кислоты отмечено в чашелистиках и гипан­тиях R. majalis и R. acicularis: 79,20 и 260,04 мг%; 83,60 и 231,00 мг% соответственно. Содержание полифенольных соединений в чашелистиках и гипантиях по видам достоверно не отличалось. Высокое содержание моносахаридов отмечено в чашелистиках и гипантиях R. mollis: 5,79±0,37% и 7,14±0,06% соответственно.

1. Strelets V.D. Rose in Culture: Biological Characteristics. Vitamin Species and Varieties. Cultivation Technology. Moscow. Russian State Agrarian University- Moscow Agricultural Academy named after K.A. Timiryazev. 2009. 193 p. (in Russ.) https://elibrary.ru/sukxpd

2. Atlas of Russian medicinal plants Sidelnikov N.I. (ed.) Moscow. AllRussian Scientific Research Institute of Medicinal and Aromatic Plants. 2021. 646 p. ISBN: 978-5-87019-094-5 (in Russ.) https://www.elibrary.ru/dqvikr

3. Kasote D.M., Katuare S.S., Hegde M.V., Bae H. Significance of antioxidant potential of plants and its relevance to therapeutic applications. International Journal of Biological Sciences. 2015;(11):982-991. https://doi.org/10.7150/ijbs.12096

4. Wu Z., Liu S., Wang F., Du Y., Zou S. Comparative responses to silicon and selenium in relation to antioxidant enzyme system and the glutathione ascorbate cycle in flowering Chinese cabbage (Brassica campestris L. ssp. Chinensis var. utilis) under cadmium stress. Environmental and Experimental Botany. 2017;(133):1-11. https://doi.org/10.1016/j.envexpbot.2016.09.005

5. Kim Y.-H., Khan A.L., Waqas M., Lee I.-J. Silicon Regulates Antioxidant Activities of Crop Plants under Abiotic-Induced Oxidative Stress: A Review. Frontiers Plant Science. 2017;(8): 510. https://doi.org/10.3389/fpls.2017.00510

6. Nowak R,. Olech M., Pecio Ł., Oleszek W., Los R., Malm A., Rzymowska J. Cytotoxic, antioxidant, antimicrobial properties and chemical composition of rose petals. Journal of the Science of Food and Agriculture. 2014;(94):560-567. https://doi.org/10.1002/jsfa.6294

7. Ren G., Xue P., Sun X., Zhao G. Determination of the volatile and polyphenol constituents and the antimicrobial. antioxidant. and tyrosinase inhibitory activities of the bioactive compounds from the by-product of Rosa rugosa Thunb. var. plena Regal tea. BMC Complementary and Alternative Medicine. 2018;(18):307. https://doi.org/10.1186/s12906-018-2374-7

8. State Pharmacopoeia of the Russian Federation. 15th edition 2023. Pharmacopoeial article 2.5.0106 (in Russ.)

9. Um M., Han T.-H., Lee J.-W. Ultrasound-assisted extraction and antioxidant activity of phenolic and flavonoid compounds and ascorbic acid from rugosa rose (Rosa rugosa Thunb.) fruit. Food Science Biotechnology. 2018;27(2):375-382. https://doi.org/10.1007/s10068-017-0247-3

10. Аleksashina S.А., Makarova N.V., Demenina L.G. Antioxidant potential of wild rose. Problems of Nutrition. 2019;88(3):84-89. (in Russ.) https://doi.org/10.24411/0042-8833-2019-10033 https://www.elibrary.ru/djxepy

11. Cendrowski A., Kraśniewska K., Przybył J.L., Zielińska A., Kalisz S. Antibacterial and Antioxidant Activity of Extracts from Rose Fruits (Rosa rugosa). Molecules. 2020;(25):1365. https://doi.org/10.3390/molecules25061365

12. Golubkina N.A., Kekina E.G., Molchanova A.V., Antoshkina M.S., Nadezhkin S.M., Soldatenko A.V. Plant antioxidants and methods for their determination. Moscow. INFRA-M. 2020. 181. https://doi.org/10.12737/1045420 (in Russ.)

13. Eslami G., Taheri S., Abdol S., Ayatollahi M., Malek G., Fallah F., Pourkaveh B.. Comparison of Rosa Nutkana Sepal Extract with Synthetic Antibiotics for Treatment of Methicillin Resistant Staphylococcus Aureus Isolated from Patients with Sty. Iranian journal of clinical infectious diseases. 2011;(6):7-11.

14. Saibel O.L. The principle of integrated use of plant materials as a tool for resource-saving technologies for producing therapeutic and prophylactic agents. Issues in Biological, Medical and Pharmaceutical Chemistry. 2021;24(12):3-10. (in Russ.) https://doi.org/10.29296/25877313-2021-12-01 https://www.elibrary.ru/wzbsfw

15. Wild Medicinal Plants of Russia: Collection. Drying. Preparation of Raw Materials (Instructions) Moscow. All-Russian Scientific Research Institute of Medicinal and Aromatic Plants. 2015. 344 p. (in Russ.)

16. Selivanova E.M., Babaeva E.Yu. Rosehip sepals are a promising medicinal plant material. Current trends in health-preserving technologies. Moscow. All-Russian Scientific Research Institute of Medicinal and Aromatic Plants. 2021:372-378. (in Russ.) https://doi.org/10.52101/9785870191027_2021_372 https://www.elibrary.ru/bvykwh

17. Korovkin O.A. Basic Terms and Concepts of the Higher Plants Morphology and Anatomy Moscow. Russian State Agrarian UniversityMoscow Agricultural Academy named after K.A. Timiryazev. 2015. 188 p. (in Russ.) https://www.elibrary.ru/bkpfpn

18. Flora of Eastern Europe. Tzvelev N.N. (ed.). Saint Petersburg. Saint Petersburg Chemical-Pharmaceutical Academy. 2001;(10):670. (in Russ.)

19. https://wfoplantlist.org/taxon/wfo-0001014409-2024-12?matched_id=wfo-0000984287&page=1 Date of access 04.03.2025

20. Tsitsilin A.N., Kovalev N.I., Korotkikh I.N. et al. Research Methodology for the Introduction of Medicinal and Essential Oil Plants. 2nd edition, revised and enlarged. Moscow. All-Russian Scientific Research Institute of Medicinal and Aromatic Plants. 2022. 64 p. (in Russ.)

21. State Pharmacopoeia of the Russian Federation. 15th edition 2023. General Pharmacopoeial article 1.5.3.0007 (in Russ.)

22. State Standard of the Russian Federation 31-640-2012. Feed. Methods for Determining Dry Matter Content. M. Standartinform. 2020. 12 p. (in Russ.)

23. Maximova T.V., Nikulina I.N., Pakhomov V.P., Shkarina E.I., Chumakova Z.V., Arzamastsev A.P. Method for determining antioxidant activity. Description of the invention for the patent of the Russian Federation. Moscow. Patent Russian Federation 2001. 2170930 С1 (in Russ.).

24. Trineeva O.V. Methods for determining the antioxidant activity of plant and synthetic origin in pharmacy (review). Development and registration of drugs. 2017;4(21):180-197. (in Russ.) https://www.elibrary.ru/ztwvex

25. Misin V.M., Klimenko I.V., Zhuravleva T.S. On the suitability of gallic acid as a standard sample of antioxidant composition. Competence. 2014;7(118):46-51. (in Russ.) https://www.elibrary.ru/snhhyf

26. Kidin V.V., Deryugin I.P., Kobzarenko V.I., Kulyukin A.N., Ladonin D.V. Agrochemistry Workshop. Moscow. Kolos. 2008. 302 p. (in Russ.)

27. Sapozhnikova E.V., Dorofeeva L.S. Determination of ascorbic acid content in colored plant extracts by the iodometric method. Canning and vegetable growing industry. 1966;(5):29-31. (in Russ.)

28. Glen S. "Duncan’s Multiple Range Test (MRT)". 2023. Statistics How To.com: Elementary Statistics for the rest of us! https://www.statisticshowto.com/duncans-multiple-range-test/

29. Vinogradova Yu.K., Kuklina A.G. Variability of the morphometric traits Rosa rugosa Thunb. hypanthium of in the secondary range. Bulletin of the Main Botanical Garden. 2015;1(201):52-58. (in Russ.) https://www.elibrary.ru/tnjkqh

30. Matvienko U.A., Baldina A.A., Durnova N.A. Pharmacognostic analysis of Rosa majalis Herrm. (R. cinnamomea L.) and Rosa rugosa Thunb. fruits, growing in the Saratov region. Gerbarium. 2024;1(1):40- 46. (in Russ.) https://doi.org/10.33380/3034-3925-2024-1-1-11 https://www.elibrary.ru/fmnvey

31. Bagirzade G.A. L-ascorbic acid (vitamin C). which boosts immunity and has an antioxidant effect. Synthesis with industrial components from D-glucose. Topical aspects of modern scientific research. CPN Publishing Group. Tokyo. 2024. P.67-77. (in Russ.)

32. Croft R.D. The chemistry and biological effects of flavonoids and phenolic acids. Annals of the New York Academy of Sciences. 1988;(4):435-442.

33. Lapin A.A., Ferubko E.V., Zelenkov V.N., Dargaeva T.D. Study of the antioxidant activity of herbal antiulcer species and its components. Butlerov communications. 2019;60(10):60-66. (in Russ.) https://www.elibrary.ru/cbridp

34. Potanina A.P., Khasanova S.R., Kudashkina N.V., Farkhutdinov R.R. Study of antioxidant activity of the "Cardiophyte" species using the chemiluminescence method. Medical Bulletin of Bashkortostan. 2013;8(5):75-77. (in Russ.) https://www.elibrary.ru/rpudtz