Оценка посевных качеств семян Lepidium sativum для фитотестирования

Актуальность. Цель работы – оценка посевных качеств пакетированных семян сортов кресс-салата, для фитотестирования.
Методы. Исследования проводили на базе Сибирского ботанического сада Национального исследовательского Томского государственного университета. Объекты исследования: семена шести сортов кресс-салата, поставляемые российскими коммерческими фирмами. Всего исследованы семена девяти образцов урожая 2021 года. Лабораторные опыты по оценке посевных качеств семян кресс-салата после 3-х лет хранения были заложены в 2024 году. Процент проросших семян и учет морфологических особенностей проводили согласно общепринятым методикам. Семена кресс-салата сорта Данский использованы для оценки аллелопатической активности донника желтого.
Результаты. Анализ полученных результатов показал, что семена коммерческих образцов кресс-салата значительно различаются по посевным качествам. Наиболее четко различия проявляются после 24 часов проращивания. У образцов с высокими посевными качествами семян (сорт Данский, образец № 2; сорт Забава, образец № 5; сорт Весенний образец № 7) отмечены наиболее крупные проростки, длина корней которых может достигать 35–42 мм, а гипокотиля 34–35 мм. Предварительные оценки посевных качеств коммерческих сортовых семян кресс-салата показали, что различия между образцами семян могут быть значительными: всхожесть варьирует от 40,0 до 97,5 %. Различия в посевных качествах семян образцов влияют на степень развития проростков кресс-салата. Для быстрой оценки качества семян рекомендуем ориентироваться на начальные этапы прорастания (процент проросших семян через 1 сутки).

1. Солдатенко А.В., Иванова М.И., Бондарева Л.Л., Тареева М.М. Капустные зеленые овощи. М.: Изд-во ФГБНУ ФНЦО, 2022. 296 с. https://www.elibrary.ru/unsafi

2. Пинчук Е.В., Беспалько Л.В., Козарь Е.Г., Балашова И.Т., Сирота С.М., Шевченко Т.Е. Ценная овощная зелень на гидропонике для круглогодичного потребления. Овощи России. 2019;(3):45-53. https://doi.org/10.18619/2072-9146-2019-3-45-53 https://www.elibrary.ru/gkuvhv

3. Курина А.Б., Железнова К.О., Соловьева А.Е., Синявина Н.Г., Панова Г.Г., Артемьева А.М. Изменчивость морфологических и биохимических признаков кресс-салата (Lepidium sativum L.) из коллекции ВИР в условиях интенсивной светокультуры. Сельскохозяйственная биология. 2023;58(5):889–901. https://doi.org/10.15389/agrobiology.2023.5.889rus https://www.elibrary.ru/piwudf

4. Синявина Н.Г., Панова Г.Г., Кулешова Т.Э., Чесноков Ю.В. Светокультура растений в современных сооружениях искусственного климата (обзор). Сельскохозяйственная биология. 2024;59(5):869–892. https://doi.org/10.15389/agrobiology.2024.5.869rus https://www.elibrary.ru/uyvfia

5. Baregama C., Goyal A. Phytoconstituents, pharmacological activity, and medicinal use of Lepidium sativum Linn.: a review. Asian Journal of Pharmaceutical and Clinical Research. 2019;12(4):45–50. https://doi.org/10.22159/ajpcr.2019.v12i4.31292

6. Alotaibi M.O., Khamis G., AbdElgawad H., Mohammed A.E., Sheteiwy M.S., Elobeid M.M., Saleh A.M. Lepidium sativum sprouts grown under elevated CO2 hyperaccumulate glucosinolates and antioxidants and exhibit enhanced biological and reduced antinutritional properties. Biomolecules. 2021;(11):1174. https://doi.org/10.3390/biom11081174

7. Painuli S., Quispe C., Herrera-Bravo J., et al. Nutraceutical profiling, bioactive composition, and biological applications of Lepidium sativum L. Oxidative Medicine and Cellular Longevity. 2022;2910411. https://doi.org/10.1155/2022/2910411

8. Пятуха В.И. Влияние срока сева на урожай и качество семян кресссалата в Западной Сибири. Второй междун. симп. Новые и нетрадиц. растения и перспективы их практ. использ. 1997;(4):135–137.

9. Демиденко Г.А., Васильева Т.В. Экотоксикологическая оценка почв в окрестностях алюминиевого завода города Красноярска методами биотестирования. Вестник КрасГАУ. 2016;9(120):44–52. https://www.elibrary.ru/wlsdlt

10. Кужина Г.Ш. Экологический мониторинг загрязнения поверхностных вод притоков р. Урал тяжелыми металлами. Экология и промышленность России. 2023;27(1):53–59. https://doi.org/10.18412/1816-0395-2023-1-53-59 https://www.elibrary.ru/nfyxde

11. Шулаев Н.С., Пряничникова В.В., Кадыров Р.Р., Быковский Н.А., Даминева Р.М. Оценка изменения фитотоксичных свойств нефтезагрязненных почв по показателям всхожести и длины проростков Lepidium sativum L. после электрохимической очистки. Самарский научный вестник. 2019;8-4(29):103–107. https://doi.org/10.24411/2309-4370-2019-14118. https://www.elibrary.ru/fzajpw

12. Курамшина З.М., Осянникова И.В., Асфандиярова Л.Р., Хакимова Г.В. Влияние нефтяного загрязнения на почвенные микроорганизмы и растения Lepidium sativum. Экология и промышленность России. 2023;27(10):23–29. https://doi.org/10.18412/1816-0395-2023-10-23-29 https://www.elibrary.ru/lncjhq

13. Pflugmacher S., Sulek A., Mader H. Heo J., Noh J.H., Penttinen O-P., Kim Y.J., Kim S., Esterhuizen M. The influence of new and artificial aged microplastic and leachates on the Germination of Lepidium sativum L. Plants. 2020;(9):339. https://doi.org/10.3390/plants9030339

14. Бухаров А.Ф., Балеев Д.Н. Аллелопатическая активность у семян овощных сельдерейных культур. Сельскохозяйственная биология. 2014;49(1):86-90. https://www.elibrary.ru/rxsxsf

15. Рахмаева А.М., Гумерова С.К., Теренжев Д.А., Шаронова Н.Л., Фицев И.М. Антимикробная активность и фитотоксичность экстрактов некоторых видов растений рода Centaurea. Вестник Казанского государственного аграрного университета. 2020;15-3(59):37–42. https://doi.org/10.12737/2073-0462-2020-37-42 https://www.elibrary.ru/hhyqju

16. Krumsri R., Iwasaki A., Suenaga K., Kato-Noguchi H. Assessment of allelopathic potential of Senna garrettiana leaves and identification of potent phytotoxic substances. Agronomy. 2022;(12):139. https://doi.org/10.3390/agronomy12010139

17. Эбель Т.В., Михайлова С.И., Эбель А.Л. Аллелопатическая активность трехреберника непахучего (Tripleurospermum inodorum (L.) Sch. Bip.). Вестник КрасГАУ. 2024;5(206):70-76. https://doi.org/10.36718/1819-4036-2024-5-70-76 https://www.elibrary.ru/wtjess

18. Мусаев Ф.Б., Харченко В.А., Антошкина М.С. Инструментально-биофизический метод оценки качества семян зеленных овощных культур. Овощи России. 2019;(3):40-44. https://doi.org/10.18619/2072-9146-2019-3-40-44 https://www.elibrary.ru/daypuv

19. Musaev F., Priyatkin, N., Potrakhov, N., Beletskiy, S., Chesnokov, Y. Assessment of Brassicaceae Seeds Quality by X-ray Analysis. Horticulturae. 2022;8(29):15. https://doi.org/10.3390/horticulturae8010029

20. Demir I., Kenanoglu B.B., Özden E. Seed vigour tests to estimate seedling emergence in cress (Lepidium sativum L.) seed lots. Not Bot Horti Agrobo. 2019;47(3):881–886. https://doi.org/10.15835/nbha47311453

21. Бухаров А.Ф., Балеев Д.Н., Бухарова А.Р. Инструментальные методы биотестирования аллелопатической активности. М.: Изд-во ФГБОУ ВПО РГАЗУ, 2015. 144 с.

22. Araniti F., Mancuso R., Lupini A., Giofrè S.V., Sunseri F., Gabriele B., Abenavoli M.R. Phytotoxic potential and biological activity of three synthetic coumarin derivatives as new natural-like herbicides. Molecules. 2015;(20):17883–17902. https://doi.org/10.3390/molecules201017883

23. Лакин Г.Ф. Биометрия: учебное пособие. Москва: Высшая школа, 1980. 352 с.