Влияние микозов на посевные качества семян шалфея лекарственного (Salvia officinalis L.) в Нечерноземной зоне РФ

Актуальность. Шалфей лекарственный – фармакопейный вид, ценное эфиромасличное растение. Способ закладки плантаций, преимущественно, семенной, при этом посевной материал может сохранять в себе патогенную микробиоту, поэтому целью исследования являлась идентификация возбудителей микозов в семенах шалфея лекарственного.

Материалы и методы. Исследование проводили на образцах из биологической коллекции семян Salvia officinalis (в составе Уникальной Научной Установки «Биологические коллекции ФГБНУ ВИЛАР»). Семена 1–5-го и 9-го годов хранения собраны с питомников Опытного поля ФГБНУ ВИЛАР. Исследования по выявлению микозов семян шалфея проводили в ФГБНУ ВНИИФ в инновационной лаборатории микробиологии. Для изучения фитопатогенов семян шалфея лекарственного был использован метод искусственных питательных сред.

Результаты. Из проведенного исследования установлено влияние преобладающего патогена. Грибы рода Alternaria при хранении семян в условиях с температурным режимом +20…+22℃ оказывают негативное влияние на посевные качества семян. На лабораторную всхожесть и энергию прорастания семян, хранившихся в холодильной камере (0…+5℃), повлияли дрожжи, отмечено значительное снижение посевных качеств. При хранении семян в режиме -18℃, установлено ингибирующее действие температуры на патогены. Установлена зависимость общей зараженности патогенами от условий и срока хранения семян. Наибольший процент поражения семян, хранившихся при комнатной температуре, отмечен в первые 2 года с момента сбора. В семенах, хранившихся 5–9 лет с температурным режимом 0…+5℃ и -18℃, развитие патогенных грибов рода Alternaria, Phoma и Rhizopus значительно сократилось. В образце, хранившемся 38 лет в морозильной камере, обнаружены Rhizopus, Cladosporium cladosporioides и Clonostachys rosea. Установлена зависимость набора патогенной микробиоты семян от предшественника в севообороте. Участки, с которых были собраны семена, кроме образца с Крымской зональной опытной станции ВИЛР, имеют разных предшественников. В семенах с первого участка отмечен наибольший процент поражения грибами со сходным составом патогенов. Общая зараженность и состав патогенов на втором участке сократились. Образец с третьего участка хранился 5 лет в морозильной камере и микозов семян в нем не выявлено.

1. Шкаликов В.А., Белошапкина О.О., Букреев Д.Д. Защита растений от болезней. 3-е изд., испр. и доп. М.: КолосС, 2010. 404 с. https://doi.org/10.25230/2412-608X-2019-4-180-179-188 https://elibrary.ru/qkwblt

2. Саенко Г.М., Шуваева Т.П., Гайтотина И.В. Болезни мяты (Mentha L.), лаванды узколистной (Lavandula angustifolia Mill.) и шалфея мускатного (Salvia sclarea L.) в коллекции ВНИИМК (обзор). Масличные культуры. 2019;(4):179-188. https://elibrary.ru/euqlqu https://doi.org/10.25230/2412-608X-2019-4-180-179-188

3. Белошапкина О.О., Бабаева Е.Ю. Защита от болезней лекарственных растений:. М.: Изд-во РГАУ-МСХА, 2012. 120 с. https://elibrary.ru/qlczbt

4. Zimowska Be., Bielecka M., Abramczyk B., Nicoletti R. Bioactive products from endophytic fungi of sages (Salvia spp.). Agriculture. 2020;10(11):543. https://doi.org/10.3390/agriculture10110543

5. Stojanovic S., Pavlović S., Acimovic M., Aleksić G. et al. Fungi on sage seed in Serbia and their effect to seed germination. 4th Conference on Medicinal and Aromatic Plants of South-East European Countries. 2006. Section 1. p. 210–213. URL: https://www.cabidigitallibrary.org/doi/full/10.5555/20133311441

6. Schulz M., Knop M., Muellenborn C., Steiner U. Root-associated microorganisms prevent caffeine accumulation in shoots of Salvia officinalis L. International Journal of Agriculture and Forestry. 2013;(3):152-158. https://doi.org/10.5923/j.ijaf.20130304.05

7. Zimowska B. et al. Fungi threatening the cultivation of sage (Salvia officinalis L.) in south-eastern Poland. Herba Pol. 2008;54(1):15-24.

8. Chrapačienė S., Rasiukevičiūtė N., Valiuškaitė A. Control of seedborne fungi by selected essential oils. Horticulturae. 2022;8(3):220. https://doi.org/10.3390/horticulturae8030220

9. Watanabe T. Pictorial Atlas of Soil and Seed Fungi Morphologies of Cultured Fungi and Key to Species. Second Edition. 2002. by CRC Press LLC. https://doi.org/10.1201/9781420040821

10. Кураков А.В., Кокаева, Л.Ю. Методы изучения разнообразия грибов в наземных и водных экосистемах. Москва: Общероссийская общественная организация Общественная национальная академия микологии, 2023. 128 c.

11. Великанов Л.Л., Гарибова Л.В., Дьяков Ю.Т. и др. Ботаника. Курс альгологии и микологии. Москва: Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова Издательский Дом (типография), 2007. 559 с. ISBN 978-5-211-05336-6. https://elibrary.ru/sugzir

12. Бабьева И.П., Чернов И.Ю. Биология дрожжей. М.: Товарищество научных изданий КМК. 2004. 221 с.

13. Ткаченко О.Б., Хошино Т. Криофильные грибы и оомицеты, их особенности. Микология и фитопатология. 2014;48(4)215-219. https://elibrary.ru/skielx