Preview

Овощи России

Расширенный поиск

Усовершенствование методов создания гибридов капусты белокочанной

https://doi.org/10.18619/2072-9146-2019-4-3-7

Полный текст:

Аннотация

Актуальность
Одним из основных направлений селекции капустных культур является создание гетерозисных гибридов F1 с комплексом хозяйственно ценных признаков. Этот процесс является длительным и трудоемким, поскольку для получения выровненных линий необходимо в течение 6-12 лет проводить инбридинг. При этом не каждая линия дает желаемый гетерозисный эффект, что, в свою очередь, требует дополнительной проверки.
Методика
Для ускорения некоторых этапов селекционного процесса в работе использовали биотехнологический метод культуры изолированных микроспор in vitro, который позволяет уже в первом поколении получать линии со 100% гомозиготностью. Комбинационную способность определяли в системе полных диаллельных скрещиваний по основным морфологическим признакам.
Результаты
В результате работы оптимизирован состав питательной среды культуры изолированных микроспор in vitro и индивидуально подобран для каждого генотипа капусты белокочанной для наибольшего выхода эмбриоидов. Максимальный выход эмбриоидов был получен на среде с рН 6,2 с использованием ампициллина 100 мг/л и зеатина 1 мг/л и составил 466,7±153,2 шт./100 бутонов. Получен принципиально новый исходный материал для селекции – удвоенные гаплоидные линии капусты белокочанной. Выделены линии, являющиеся наилучшими исходными формами при создании высокогетерозисных гибридов F1 по урожайности, линии с компактной розеткой листьев, с оптимальной наружной и короткой внутренней кочерыгой. Проведенные исследования показали, что с учетом оптимизации некоторых этапов селекционного процесса для создания чистых линий капусты белокочанной требуется 3 года, что сокращает селекционный процесс в 2 раза.

Об авторах

А. И. Минейкина
ФГБНУ «Федеральный научный центр овощеводства»
Россия

Минейкина Анна Игоревна – кандидат с.-х. наук, н.с. лаборатории биотехнологии

143072, Московская обл., Одинцовский р-н, п. ВНИИССОК, ул. Селекционная, д. 14



Л. Л. Бондарева
ФГБНУ «Федеральный научный центр овощеводства»
Россия

Бондарева Людмила Леонидовна – доктор с.-х. наук, зав. лаб. селекции и семеноводства капустных культур

143072, Московская обл., Одинцовский р-н, п. ВНИИССОК, ул. Селекционная, д. 14



Д. В. Шумилина
ФГБНУ «Федеральный научный центр овощеводства»
Россия

Шумилина Дарья Владимировна – кандидат биол. наук, ст.н.с. лаборатории биотехнологии

143072, Московская обл., Одинцовский р-н, п. ВНИИССОК, ул. Селекционная, д. 14



Е. А. Домблидес
ФГБНУ «Федеральный научный центр овощеводства»
Россия

Домблидес Елена Алексеевна – кандидат с.-х. наук, зав. лабораторией биотехнологии

143072, Московская обл., Одинцовский р-н, п. ВНИИССОК, ул. Селекционная, д. 14



А. В. Солдатенко
ФГБНУ «Федеральный научный центр овощеводства»
Россия

Солдатенко Алексей Васильевич – доктор с.-х. наук, проф. РАН, главный н.с.

143072, Московская обл., Одинцовский р-н, п. ВНИИССОК, ул. Селекционная, д. 14



Список литературы

1. Пивоваров В.Ф., Старцев В.И. Капуста, её виды и разновидности (разнообразие и способы выращивания) // М.: ВНИИССОК. – 2006. – 192 с.

2. Бондарева, Л.Л. Научное обоснование и разработка системы методов селекции и семеноводства капустных культур: автореф. дис. … д-ра с.-х. наук: 06.01.05 /М., 2009. – 47 с.

3. Dunwell J.M. Haploids in flowering plants: origins and exploitation // J. Plant Biotech. – 2010. – Vol. 8. – P.377-424.

4. Шмыкова Н.А., Шумилина Д.В., Супрунова Т.П. Получение удвоенных гаплоидов у растений рода Brassica L. // Вавиловский журнал генетики и селекции. – 2015. – Т.19. – №1. – С.111-120.

5. Монахос С.Г. Интеграция современных биотехнологических и классических методов в селекции овощных культур: автореф. дис. … д-ра с.-х. наук: 06.01.05 / М., 2015. – 22 с.

6. Бондарева Л.Л., Разин О.А. ИСПОЛЬЗОВАНИЕ КАМЕР ИСКУССТВЕННОГО КЛИМАТА ПРИ СЕЛЕКЦИИ КАПУСТЫ. Овощи России. 2014;(4):37-39. https://doi.org/10.18619/2072-9146-2014-4-37-39

7. Alexander M.P. Differential staining of aborted and non-aborted pollen // Stain technol. – 1969. – Vol.44. – P.117-122.

8. Домблидес Е.А., Шмыкова Н.А., Шумилина Д.В., Заячковская Т.В., Минейкина А.И., Козарь Е.В., Ахраменко В.А., Шевченко Л.Л., Кан Л.Ю., Бондарева Л.Л., Домблидес А.С. Технология получения удвоенных гаплоидов в культуре микроспор семейства капустные (методические рекомендации) / ВНИИССОК. – М.: Изд-во ВНИИССОК. – 2016. – 40 с.

9. Lichter R. Induction of haploid plants from isolated pollen of Brassica napus // Z. Pflanzenphysiol. – 1982. – Vol.105. – P.427–434.

10. Gamborg O.L., Miller R.A., Ojima K. Nutrients requirements of suspension cultures of soybean root cells // Exp Cell Res. – 1968. – Vol.50. – P.151–158.

11. Murashige T.A., Skoog F. Revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures // Physiologia Plantarum. – 1962. – V.15. – P.473-497.

12. Шумилина Д.В., Шмыкова Н.А., Бондарева Л.Л., Супрунова Т.П. Влияние генотипа и компонентов среды на эмбриогенез в культуре микроспор капусты китайской Brassica rapa ssp. сhinensis сорта Ласточка // Известия РАН. Серия биологическая. – 2015. – №4. – 368с.

13. Доспехов Б.А. Методика полевого опыта / под ред. Б.А. Доспехова // М.: Агропроимздат, 1985. – 350 с.

14. Griffing B.А. Concept of general and specific combining ability in relation to diallel crossing systems // Australian J. Biol. Sci. – 1956. – Vol.9. – P.463-493.

15. Сапожникова Е.В., Дорофеева Л.C. Определение содержания АК в окрашенных растительных экстрактах йодометрическим методом // Консервная и овощесушильная промышленность. – 1966. – № 5. – 29 с.

16. Квасников Б.В., Белик Т.А. Методика оценки сортов капусты на устойчивость к киле // М., ВАСХНИЛ, 1970. – 16 с.

17. Маслова А.А., Ушаков А.А., Старцев В.И., Бондарева Л.Л. БОЛЕЗНЕУСТОЙЧИВОСТЬ СОРТОВ КАПУСТЫ БЕЛОКОЧАННОЙ КАК ФАКТОР СНИЖЕНИЯ ФИТОСАНИТАРНЫХ РИСКОВ В ОВОЩЕВОДСТВЕ. Овощи России. 2013;(3):50-54. https://doi.org/10.18619/2072-9146-2013-3-50-54

18. Lazzeri P.A., Dunwell J.M. In vitro shoot regeneration from seedling root segments of Brassica oleracea and Brassica napus cultuvars // Ann. Bol. – 1984. – Vol. 54. – P. 341.

19. Klimaszewska K., Keller W.A. Plant regeneration from stem cortex protoplasts of Brassica napus // Plant Cell Tissue Org Cult. – 1987. – Vol.8. – P. 225-233.

20. Монахос С.Г., Нгуен М.Л., Безбожная А.В. и др. Связь плоидности с числом хлоропластов в замыкающих клетках устьиц у диплоидных и амфидиплоидных видов Brassica // С.-х. биология. – 2014. – №5. – С.44-54.


Для цитирования:


Минейкина А.И., Бондарева Л.Л., Шумилина Д.В., Домблидес Е.А., Солдатенко А.В. Усовершенствование методов создания гибридов капусты белокочанной. Овощи России. 2019;(4):3-7. https://doi.org/10.18619/2072-9146-2019-4-3-7

For citation:


Mineykina A.I., Bondareva L.L., Shumilina D.V., Domblides E.A., Soldatenko A.V. Improvement of methods of creating hybrids of cabbage. Vegetable crops of Russia. 2019;(4):3-7. (In Russ.) https://doi.org/10.18619/2072-9146-2019-4-3-7

Просмотров: 51


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2072-9146 (Print)
ISSN 2618-7132 (Online)