Особенности патогенеза антракноза картофеля (Colletotrichum coccodes) и меры защиты (обзор)
https://doi.org/10.18619/2072-9146-2025-5-96-104
Аннотация
Цель. Настоящий обзор посвящён систематизации современных данных о возбудителе антракноза картофеля Colletotrichum coccodes, его патогенезе, эпидемиологии и мерах защиты. Повышение значимости болезни в последние десятилетия связано с ростом требований к товарному виду мытого и фасованного картофеля, что обусловило необходимость комплексного анализа накопленных знаний.
Методология. В основу обзора положен анализ отечественных и зарубежных публикаций последних лет, включая результаты микологических, молекулярно-генетических и эпидемиологических исследований. Использованы сведения о симптомах болезни, источниках и путях распространения инфекции, методах диагностики (микологические, ПЦР-ориентированные, цифровые), а также данных по агротехническим, химическим и интегрированным стратегиям защиты картофеля.
Результаты. Показано, что Colletotrichum coccodes имеет широкий круг хозяев, включая более 50 видов культурных и сорных растений, что существенно осложняет контроль болезни. Основным источником инфекции служат склероции в почве и на растительных остатках, сохраняющиеся до 8–13 лет. Наиболее вредоносные проявления связаны с ухудшением товарного качества клубней, особенно при длительном хранении. Диагностика в полевых условиях затруднена сходством симптомов с серебристой паршой, однако современные ПЦР-тесты обеспечивают высокую точность. Химические фунгициды обладают ограниченной эффективностью, при этом наибольшие результаты достигаются при их профилактическом применении в сочетании с агротехническими мерами. Перспективным направлением является интегрированная защита, включающая использование здорового посадочного материала, уничтожение сорняков-резервуаров инфекции, оптимизацию агротехники и мониторинг возбудителя.
Заключение. Антракноз картофеля остаётся значимой угрозой для картофелеводства, снижая урожайность и товарность клубней. Эффективная борьба возможна только при применении комплекса профилактических и интегрированных мероприятий. Дальнейшие исследования необходимы для разработки устойчивых сортов, новых фунгицидов и цифровых систем мониторинга болезни.
Ключевые слова
Об авторах
К. С. ТрошинРоссия
Константин Сергеевич Трошин – аспирант, ассистент кафедры защиты растений
127550, г. Москва, ул. Тимирязевская, 49
Р. И. Тараканов
Россия
Рашит Ислямович Тараканов – кандидат биол. наук, доцент кафедры защиты растений
127550, г. Москва, ул. Тимирязевская, 49
П. В. Евсеев
Россия
Петр Владимирович Евсеев – кандидат биол. наук, заведующий лабораторией молекулярной микробиологии
117513, г. Москва, улица Островитянова, 1, стр. 7
С. И. Чебаненко
Россия
Светлана Ивановна Чебаненко – кандидат с.-х. наук, доцент кафедры защиты растений
127550, г. Москва, ул. Тимирязевская, 49
Ф. С.-У. Джалилов
Россия
Февзи Сеид-Умерович Джалилов – доктор биол. наук, заведующий кафедрой защиты растений
127550, г. Москва, ул. Тимирязевская, 49
Список литературы
1. Lees A.K., Hilton A.J. Black dot (Colletotrichum coccodes): an increasingly important disease of potato. Plant Pathology. 2003;52(1):3–12. https://doi.org/10.1046/j.1365-3059.2003.00793.x
2. Казарцев И.А., Гомжина М.М., Гасич Е.Л., Хлопунова Л.Б., Ганнибал Ф.Б. Разнообразие грибов рода Colletotrichum на некоторых дикорастущих и культурных растениях. Микология и фитопатология. 2022;56(2):127–139. https://doi.org/10.31857/S0026364822020064 https://elibrary.ru/kjrlwm
3. Yarmeeva M., Kutuzova I., Kurchaev M., et al. Colletotrichum species on cultivated Solanaceae crops in Russia. Agriculture. 2023;13(3):511. https://doi.org/10.3390/agriculture13030511
4. Andrivon D., Ramage K., Guérin C., Lucan M., Jouan B. Distribution and fungicide sensitivity of Colletotrichum coccodes in French potatoproducing areas. Plant Pathology. 1997;46(5):722–728. https://doi.org/10.1046/j.1365-3059.1997.d01-60.x
5. Andrivon D., Lucas J.M., Guérin C., Jouan B. Colonization of roots, stolons, tubers and stems of various potato (Solanum tuberosum) cultivars by the black dot fungus Colletotrichum coccodes. Plant Pathology. 2002;47(4):440–445. https://doi.org/10.1046/j.1365-3059.1998.00267.x
6. Johnson D.A. Effect of foliar infection caused by Colletotrichum coc-codes on yield of Russett Burbank potato. Plant Disease. 1994;78:1075–1078.
7. Errampalli D., Saunders J., Cullen D.W. A PCR-based method for detection of potato pathogen, Helminthosporium solani, in silver scurf infected tuber. Journal of Microbiological Methods. 2001;44(1):59–68. https://doi.org/10.1016/S0167-7012(00)00240-2
8. Hamm P.B., Johnson D.A. Silver scurf and black dot development on fresh marketed Russet Norkotah tubers in storage. Potato Progress. 2012;12(17):4.
9. Sanzo-Miró M., Medina A., Terry L.A., Alamar M.C. Elucidating the impact of environmental factors on the growth of Colletotrichum coc-codes strains isolated from potato tubers in Great Britain. International Journal of Food Microbiology. 2024;423:110843. https://doi.org/10.1016/j.ijfoodmicro.2024.110843
10. Johnson D.A., Geary B., Tsror L. Potato black dot – the elusive pathogen, disease development and management. American Journal of Potato Research. 2018;95(4):340–350. https://doi.org/10.1007/s12230-018-9633-5
11. Tsror L., Hazanovsky M. Effect of coinoculation by Verticillium dahliae and Colletotrichum coccodes on disease symptoms and fungal colonization in four potato cultivars. Plant Pathology. 2001;50:483–488. https://doi.org/10.1046/j.1365-3059.2001.00585.x
12. Farley J.D. A selective medium for assay of Colletotrichum coc-codes in soil. Phytopathology. 1972;62(11):1288.
13. Platt H.W., Bollen G.J. The influence of isolation procedure on recovery of Verticillium species and Colletotrichum coccodes from colonized potato stems. Mycological Research. 1995;99(8):942–944. https://doi.org/10.1016/S0953-7562(09)80753-3
14. Carnegie S.F., Choiseul J.W., Roberts A.M.I. Detection of Colletotrichum coccodes and Helminthosporium solani in soils by bioassay. Plant Pathology. 2003;52(1):13–21. https://doi.org/10.1046/j.1365-3059.2003.00794.x
15. Sreenivasaprasad S., Meehan B.M., Mills P.R., Brown A.E. Phylogeny and systematics of 18 Colletotrichum species based on ribosomal DNA spacer sequences. Genome. 1996;39(3):499–512. https://doi.org/10.1139/g96-064
16. Ryazantsev D.Y., Chudinova E.M., Kokaeva L.Y., et al. Detection of Colletotrichum coccodes by real-time PCR. Biological Bulletin Reviews. 2023;13(Suppl1):S108–S113. https://doi.org/10.1134/S2079086423070101
17. Кутузова И.А. Внутривидовая вариабельность фитопатогенных грибов Colletotrichum coccodes и Helminthosporium solani: дис. … канд. биол. наук. Москва: МГУ; 2018. 140 с.
18. Denner F.D.N., Millard C.P., Wehner F.C. The effect of seed- and soil-borne inoculum of Colletotrichum coccodes on the incidence of black dot on potato. Potato Research. 1998;41:51–56. https://doi.org/10.1007/BF02360261
19. Nitzan N., Cummings T.F., Johnson D.A. Disease potential of soil- and tuberborne inocula of Colletotrichum coccodes and black dot severity on potato. Plant Disease. 2008;92(11):1497–1502. https://doi.org/10.1094/PDIS-92-11-1497
20. Pasche J.S., Taylor R.J., Gudmestad N.C. Colonization of potato by Colletotrichum coccodes: effect of soil infestation and seed tuber and foliar inoculation. Plant Disease. 2010;94(7):905–914. https://doi.org/10.1094/PDIS-94-7-0905
21. Nitzan N., Evans M., Johnson D.A. Colonization of potato plants after aerial infection by Colletotrichum coccodes, causal agent of potato black dot. Plant Disease. 2006;90:999–1003. https://doi.org/10.1094/PD-90-0999
22. Tsror L., Johnson D.A. Colletotrichum coccodes on potato. In: Prusky D., Freeman S., Dickman M.B. (eds.). Colletotrichum – Host Specificity, Pathology and Host–Pathogen Interaction. St. Paul MN: APS Press; 2000: 362–373.
23. Nitzan N., Cummings T.F., Johnson D.A. Effect of seed-tuber generation, soilborne inoculum, and azoxystrobin application on development of potato black dot caused by Colletotrichum coccodes. Plant Disease. 2005;89:1181–1185. https://doi.org/10.1094/PD-89-1181
24. Nitzan N., Lucas B.S., Christ B.J. Colonization of rotation crops and weeds by the potato black dot pathogen Colletotrichum coccodes. American Journal of Potato Research. 2006;83:503–507. https://doi.org/10.1007/BF02883511
25. Dashwood E.P., Fox R.A., Perry D.A. Effect of inoculum source on root and tuber infection by potato blemish disease fungi. Plant Pathology. 1992;41:215–223. https://doi.org/10.1111/j.1365-3059.1992.tb02340.x
26. Read P.J., Hide G.A. Effect of inoculum source and irrigation on black dot disease of potato (Colletotrichum coccodes) and its development during storage. Potato Research. 1988;31:493–500. https://doi.org/10.1007/BF02357887
27. Denner F.D.N., Millard C., Geldenhuys A., Wehner F.C. Treatment of seed potatoes with prochloraz for simultaneous control of silver scurf and black dot on progeny tubers. Potato Research. 1997;40:221–227. https://doi.org/10.1007/BF02358247
28. Dillard H.R. Influence of temperature, pH, osmotic potential, and fungicide sensitivity on germination of conidia and growth from sclerotia of Colletotrichum coccodes in vitro. Phytopathology. 1988;78:1357–1361.
29. Brierley J.L., Stewart J.A., Lees A.K., Hilton A.J., Wale S.J., Gladders P. Factors affecting the development and control of black dot on potato tubers. Plant Pathology. 2015;64(1):167–177. https://doi.org/10.1111/ppa.12238
30. Buonaurio R. Occurrence of black dot of potato caused by Colletotrichum coccodes in central Italy. Plant 2002;86(5):562. https://doi.org/10.1094/pdis.2002.86.5.562cDisease.
31. Tsror L., Erlich O., Hazanovsky M. Effect of Colletotrichum coc-codes on potato yield, tuber quality and stem colonization during spring and autumn. Plant Disease. 1999;83:561–565. https://doi.org/D-1999-0329-01R
32. Tsror L. Effect of light duration on severity of black dot caused by Colletotrichum coccodes on potato. Plant Pathology. 2004;53:288–293. https://doi.org/10.1111/j.0032-0862.2004.01011.x
33. Krikun J., Orion D. Verticillium wilt of potato: importance and control. Phytoparasitica. 1979;7:107–116.
34. Blaisdell B., Geary B., Morton J., Kearns M., Johnson D.A. Available nitrogen levels influence Colletotrichum coccodes infection severity of Russet Burbank potato roots. Phytopathology. 2009;99(6):12.
35. Кузнецова М.А., Денисенков И.А., Рогожин А.Н., Сметанина Т.И. Антракноз – вредоносное заболевание картофеля. Картофель и овощи. 2020;(6):20–23. https://elibrary.ru/hxmlqi
36. Belov G.L., Belosokhov A.F., Kutuzova I.A., et al. Colletotrichum coccodes in potato and tomato leaves in Russia. Journal of Plant Diseases and Protection. 2018;125:311–317. https://doi.org/10.1007/s41348-017-0138-0
37. Tyvaert L., Everaert E., Lippens L., et al. Interaction of Colletotrichum coccodes and Verticillium dahliae in pepper plants. European Journal of Plant Pathology. 2019;155:1303–1317. https://doi.org/10.1007/s10658-019-01857-1
38. Shivas R.G., Tan Y.P., Edwards J., Dinh Q., et al. Colletotrichum species in Australia. Australasian Plant Pathology. 2016;45:447–464. https://doi.org/10.1007/s13313-016-0443-2
39. Liu F., Cai L., Crous P.W., Damm U. Circumscription of the anthracnose pathogens Colletotrichum lindemuthianum and C. nigrum. Mycologia. 2013;105:844–860. https://doi.org/10.3852/12-315
40. Sucianto E.T., Abbas M., Purwati E.S. Anthracnose disease on vegetable crops in Serang village, District of Karangreja, Purbalingga Regency. Biosaintifika: Journal of Biology & Biology Education. 2020;12(1):50–56. http://dx.doi.org/10.15294/biosaintifika.v12i1.21818
41. Rodeva R., Karov I., Stoyanova Z., Kovacevik B., Manova V., Georgieva R. Phomopsis capsici and Colletotrichum coccodes infecting pepper in Macedonia. In: Marisavljevic D. (ed.) Proceedings of the International Symposium on Current Trends in Plant Protection. Belgrade: Institute for Plant Protection and Environment; 2012: 257–263.
42. Chakradhar M. Colletotrichum coccodes (black dot of potato). CABI Compendium. 2022. doi:10.1079/cabicompendium.14894
43. Bellé C., Ramos R.F., Moccellin R., Farias C.R.J. Detection of Colletotrichum coccodes causing leaf anthracnose on Pisum sativum in southern Brazil. Journal of Plant Pathology. 2020;102(1):255. https://doi.org/10.1007/s42161-019-00392-6
44. Chesters C.G.C., Hornby D. Studies on Colletotrichum coccodes: II. Alternative host tests and tomato fruit inoculations using a typical tomato root isolate. Transactions of the British Mycological Society. 1965;48(4):583–596.
45. Ditommaso A., Watson A.K. Impact of a fungal pathogen, Colletotrichum coccodes, on growth and competitive ability of Abutilon theophrasti. New Phytologist. 1995;131(1):51–60. https://doi.org/10.1111/j.1469-8137.1995.tb03054.x
46. Honeycutt C.W., Clapham W.M., Leach S.S. Crop rotation and N fertilization effects on growth, yield, and disease incidence in potato. American Potato Journal. 1996;73(2):45–61. https://doi.org/10.1007/BF02854760
47. Denner F.D.N., Millard C.P., Wehner F.C. Effect of soil solarization and mouldboard ploughing on black dot of potato, caused by Colletotrichum coccodes. Potato Research. 2000;43:195–201. https://doi.org/10.1007/BF02358079
48. Peters J.C., Harper G., Brierley J.L., Lees A.K., Wale S.J., Hilton A.J., Gladders P., Boonham N., Cunnington A.C. The effect of post-harvest storage conditions on the development of black dot (Colletotrichum coccodes) on potato. Plant Pathology. 2016;65:1484–1491. https://doi.org/10.1111/ppa.12535
49. Komm D.A., Stevenson W.R. Tuber-borne infection of Solanum tuberosum ‘Superior’ by Colletotrichum coccodes. Plant Disease Reporter. 1978; 62(8): 682–687.
50. Belov D.A., Khiutti A.V. Modern phytopathogenic complex of potato diseases and measures to prevent their spread in Russia. Potato and Vegetables. 2022;5:18–24. https://doi.org/10.25630/PAV.2022.52.94.003
51. Brierley J.L., Stewart J.A., Lees A.K. Quantifying potato pathogen DNA in soil. Applied Soil Ecology. 2009;41:234–238. https://doi.org/10.1016/J.APSOIL.2008.11.004
52. Kuznetsova M.A., Statsyuk N.V., Demidova V.N., Semeniuk I.N., et al. Complex approach to control black dot disease in potato. Agronomy. 2024;14(7):1373. https://doi.org/10.3390/agronomy14071373
53. Cummings T.F., Johnson D.A. Effectiveness of early-season, single applications of azoxystrobin for the control of potato black dot as evaluated by three assessment methods. American Journal of Potato Research. 2008;85:422–431. https://doi.org/10.1007/s12230-008-9040-4
54. Ingram J., Cummings T.F., Johnson D.A. Response of Colletotrichum coccodes to selected fungicides using a plant inoculation assay and efficacy of azoxystrobin applied by chemigation. American Journal of Potato Research. 2011;88(4):309–317. https://doi.org/10.1007/s12230-011-9195-2
55. Black dot (Colletotrichum coccodes) the elusive disease. 2022. [Электронный ресурс] https://static1.squarespace.com/static/6046dbe313fcb01afb282298/t/62f34d1c5eec2b12a327907e/1660112158422/Black+Dot.pdf
56. Massana-Codina J., Schnee S., Allard P.M., Rutz A., et al. Insights on the structural and metabolic resistance of potato (Solanum tuberosum) cultivars to tuber black dot (Colletotrichum coccodes). Frontiers in Plant Science. 2020;11:1287. https://doi.org/10.3389/fpls.2020.01287
Рецензия
Для цитирования:
Трошин К.С., Тараканов Р.И., Евсеев П.В., Чебаненко С.И., Джалилов Ф.С. Особенности патогенеза антракноза картофеля (Colletotrichum coccodes) и меры защиты (обзор). Овощи России. 2025;(5):96-104. https://doi.org/10.18619/2072-9146-2025-5-96-104
For citation:
Troshin K.S., Tarakanov R.I., Evseev P.V., Chebanenko S.I., Dzhalilov F.S. Features of the pathogenesis of potato anthracnose (Colletotrichum coccodes) and protective measures (review). Vegetable crops of Russia. 2025;(5):96-104. (In Russ.) https://doi.org/10.18619/2072-9146-2025-5-96-104

































