Preview

Овощи России

Расширенный поиск

Пища как фактор, определяющий физиологическое состояние популяций фитофагов-вредителей сельскохозяйственных культур

https://doi.org/10.18619/2072-9146-2024-5-84-90

Аннотация

Актуальность. Трофические отношения, наряду с конкуренцией и мутуализмом, являются наиболее общими и значимыми в экосистемах. Для развития, выживания и выведения потомства насекомым необходимо получать определенные количества и соотношения питательных веществ. Продукты питания насекомых представляют собой сложные смеси питательных и непитательных (иногда токсичных) соединений: макроэлементы (белки, углеводы и липиды), микроэлементы (витамины и минералы) и воду. Некоторые из питательных веществ являются незаменимыми, насекомые лишены способности синтезировать их самостоятельно и должны получать их с пищей или из полезных симбионтов. В системе «фитофаг-растение» хорошо развиты механизмы распознавания, позволяющие насекомым успешно расселяться, размножаться и питаться на конкретных видах растений. Комплекс гидролитических ферментов кишечника насекомых является одной из основных мишеней для действия защитных реакций растения, т.к. именно этими ферментами определяется доступность структурных веществ для фитофагов. Поэтому ферменты кишечника фитофагов играют одну из ведущих ролей в механизмах адаптации насекомых к энтоморезистентности кормовых растений. В частности, при синтезе в кормовых растениях ингибиторов протеиназ в результате индуцированной энтоморезистентности, в кишечнике насекомого может изменяться состав ферментов, что приводит к уходу от действия этих ингибиторов. При взаимодействии видов в пищевых цепях возникновение комплекса взаимоприспособлений находится в зависимости от сложной констелляции противоречивых отношений, связывающих потребителей и пищевые объекты. Механизмы такого влияния могут лежать в области аллелохимических взаимоотношений в системе «фитофаг – растение-реципиент». Аллелопатические взаимоотношения – одни из наиболее сложных, так как в данной форме тесно переплетаются прямое и опосредствованное влияние. Растения при повреждении фитофагами активируют защитные реакции, которые состоят из нескольких механизмов, включая увеличение концентрации вторичных метаболитов, многие из которых являются фенольными соединениями. 

Целью работы является описание механизмов взаимоотношений в системе «фитофаг-растение». Заключение. Управление процессами внутриводовой дивергенции насекомых-фитофагов в агробиоценозах в целях предотвращения появления рас и популяций вредителей, адаптированных к обитанию на первоначально устойчивых к ним формах растений возможно при соблюдении перехода к целенаправленной селекции сельскохозяйственных культур на устойчивость к комплексу вредителей. 

Об авторах

Н. В. Мацишина
Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Федеральный научный центр агробиотехнологий Дальнего Востока им. А.К. Чайки»
Россия

Наталия Валериевна Мацишина – кандидат биологических наук, старший научный сотрудник лаборатории селекции и генетических исследований полевых культур

Scopus Author ID: 57218616526

692539, Приморский край, г. Уссурийск, п. Тимирязевский, ул. Воложенина, 30Б



О. А. Собко
Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Федеральный научный центр агробиотехнологий Дальнего Востока им. А.К. Чайки»
Россия

Ольга Абдулалиевна Собко – научный сотрудник

лаборатории селекции и генетических исследований полевых культур

Scopus Author ID: 57218617568

692539, Приморский край, г. Уссурийск, п. Тимирязевский, ул. Воложенина, 30Б



М. В. Ермак
Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Федеральный научный центр агробиотехнологий Дальнего Востока им. А.К. Чайки»
Россия

Марина Владимировна Ермак – младший научный сотрудник лаборатории селекции и генетических исследований полевых культур

692539, Приморский край, г. Уссурийск, п. Тимирязевский, ул. Воложенина, 30Б



Список литературы

1. Tai H.H., Vickruck J. Potato resistance against insect herbivores. In: Insect Pests of Potato. Global Perspectives on Biology and Management. Eds: A. Alyokhin, S. Rondon, Y. Gao. 2nd ed., chapter 14. London, UK: Academic Press; 2022. pp. 277296

2. Nietupski M., Ludwiczak E., Olszewski J., Gabry ' s B., Kordan B. Effect of Aphid Foraging on the Intensity of Photosynthesis and Transpiration of Selected Crop Plants in Its Early Stages of Growing. Agronomy. 2022;12(10):2370. https://doi.org/10.3390/agronomy12102370

3. Bentham A.R., De la Concepcion J.C., Mukhi N., Zdrzałek R., Draeger M., Gorenkin D., Hughes R.K., Banfield M.J.. A molecular roadmap to the plant immune system. Journal of Biological Chemistry. 2020;295(44):14916-14935. https://doi.org/10.1074/jbc.REV120.010852

4. Miller R.N., Costa Alves G.S., Van Sluys M.A. Plant immunity: Unravelling the complexity of plant responses to biotic stresses. Annals of Botany. 2017;119(5):681-687. https://doi.org/10.1093/aob/mcw284

5. Doughari J.H. An Overview of Plant Immunity. J. Plant Pathol. Microbiol. 2015;6(11): 322. DOI:10.4172/2157-7471.1000322

6. Pélissier R., Cyrille V., Morel J.-B. Plant immunity: Good fences make good neighbors? Curr. Opin. Plant Biol. 2021;62:102045. https://doi.org/10.1016/j.pbi.2021.102045

7. Jones J., Dangl J. The plant immune system. Nature. 2006;444(7117):323-329. https://doi.org/10.1038/nature05286

8. Vavilov N.I. Study on plant immunity to infectious diseases. Мoscow, Leningrad: Sel'khozgiz; 1935. 100 p. (In Russ.)

9. Rubin B.A., Artsikhovskaya E.A. Biochemistry and physiology of plant immunity. Moscow: Vysshaya shkola; 1968. 416 p. (In Russ.)

10. Pascutti Simão T.M, Silva F.C, Guerreiro Ju.C., Boiça Junior A.L. Antixenosis in Constitutive Resistance in Maize Genotypes to the Stink Bug Diceraeus melacanthus. Journal of Agricultural Science. 2023;15(11):57. https://doi.org/10.5539/jas.v15n11p57

11. Shapiro I.D., Vilkova N.A., Slepyan E.I. Plant immunity to pests and diseases. L.: Agropromizdat; 1986. 188 p. (In Russ.)

12. Masters G.J., Brown V.K. Plant-mediated interactions between two spatially separated insects. Funct Ecol. 1992;6:175–179.

13. Shpirnaya I.A., Ibragimov R.I., Umarov I.A. Suppression of Activity Hydrolytic Enzymes the Larvaes the Potato Beetles of Protein from Plants. Bull. Bashkir Univ. 2006;11:49-52. (In Russ.)

14. Chandel R.S., Sharma P.C., Verma K.S., Mehta P.K., Vinod K. Insect pests of potato – III: Leaf eating and defoliating insects. Pestology. 2011;35:60-66.

15. Chandel R.S. Chandla V.K., Verma K.S., Pathania M. Insect Pests of Potato Global Perspectives on Biology and Management. In: Insect pests of potato in India: biology and management. Eds: Giordanengo P., Vincent C., Alyokhin A. Waltham, MA: Academic Press; 2013. pp. 227-268.

16. Chandel R.S., Chandla V.K. Managing tuber damaging pests of potato. Indian Horticulture. 2003;48:15-17.

17. Courtney S. Coevolution of pierid butterflies and their cruciferous foodplants. III. Anthocharis cardamines (L.) survival, development and oviposition on different plants. Oecologia. 1981;51:91-96. https://doi.org/10.1007/BF00344658

18. Andrew N.R., Roberts I.R., Hill S.J. Insect herbivory along environmental gradients. Open Journal of Ecology. 2012;2:202-213

19. Marchin R., Zeng H., Hoffmann W. Drought-deciduous behavior reduces nutrient losses from temperate deciduous trees under severe drought. Oecologia. 2010;163(4):845-854. https://doi.org/10.1007/s00442-010-1614-4

20. Grostal P., O’Dowd D.J. Plants, mites and mutualism: Leaf domatia and the abundance and reproduction of mites Viburnum tinus. Oecologia. 1994; 97(3): 308-315. DOI: 10.1007/BF00317319

21. Joern A., Provin T., Behmer S.T. Not just the usual suspects: Insect herbivore populations and communities are associated with multiple plant nutrients. Ecology. 2012;93(5):1002-1015.

22. Schoonhoven L.M., van Loon J.J.A., Dicke M. Insect-plant Biology. Oxford, UK: Oxford University Press; 2005. 421 p.

23. Read J., Stokes A. Plant biomechanics in an ecological context. American Journal of Botany. 2006;93(10): 1546-1565. DOI: 10.3732/ajb.93.10.1546

24. Howe G.A., Jander G. Plant immunity to insect herbivores. Annu. Rev. Plant Biol. 2008;59:41-66. https://doi.org/10.1146/annurev.arplant.59.032607.092825

25. Verhage A., van Wees S.C.M., Pieterse C.M.J. Plant immunity: it’s the hormones talking, but what do they say? Plant Physiol. 2010;154(2):536-540. https://doi.org/10.1104/pp.110.161570

26. Hare J.D. Ecological role of volatiles produced by plants in response to damage by herbivorous insects. Annu. Rev. Entomol. 2011;56:161-180. https://doi.org/10.1146/annurev-ento-120709-144753

27. Dudareva N., Negre F., Nagegowda D.A., Orlova I. Plant volatiles: recent advances and future perspectives. Crit. Rev. Plant Sci. 2006;25(5):417-440. https://doi.org/10.1080/07352680600899973

28. Arimura G.I., Matsui K., Takabayashi J.Chemical and molecular ecology of herbivore-induced plant volatiles: proximate factors and their ultimate functions. Plant and Cell Physiology. 2009;50(5):911-923. https://doi.org/10.1093/pcp/pcp030

29. Agrawal A.A., Janssen A., Bruin J., Posthumus M.A., Sabelis M.W. An ecological cost of plant defence: attractiveness of bitter cucumber plants to natural enemies of herbivores. Ecology Letters. 2002;5:377-385.

30. War A.R., Paulraj M.G., War M.Y., Ignacimuthu S. Herbivoreand elicitor-induced resistance in groundnut to Asian armyworm, Spodoptera litura (Fab.) (Lepidoptera: Noctuidae). Plant Signal. Behav. 2011;6(11):1769-1777. https://doi.org/10.4161/psb.6.11.17323

31. Karban R. The ecology and evolution of induced resistance against herbivores. Functional Ecology. 2011;25(2): 339-347. DOI:10.1111/j.1365-2435.2010.01789.x

32. Sharma H.C., Ortiz R. Host plant resistance to insects: An eco-friendly approach for pest management and environment conservation. J. Environ. Biol. 2002;23(2):111135.

33. Simmonds M.S.J. Flavonoid-insect interactions:.recent advances in our knowledge. Phytochemistry. 2003;64(1):21-30. https://doi.org/10.1016/s0031-9422(03)00293-0

34. Duffey S.S., Stout M.J. Antinutritive and toxic components of plant defense against insects. Arch. Insect. Biochem. Physiol. 1996;32:3-37

35. Steppuhn A., Baldwin I.T. Resistance management in a native plant: nicotine prevents herbivores from compensating for plant protease inhibitors. Ecol. Lett. 2007;10(6):499-511. https://doi.org/10.1111/j.1461-0248.2007.01045.x

36. Simpson S.J., Simpson C.L. The mechanisms of nutritional compensation by phytophagous insects. In: Insect-Plant Interactions. Ed: E.A. Bemays. 2nd ed. Boca Raton, Fl: CRC Press; 1990. pp 111-160.

37. Bernays E.A. Evolution of feeding behavior in insect herbivores. BioScience. 1998;48(1):35-44. https://doi.org/10.2307/1313226

38. Bernays E.A. Phytophagous insects. In: Encyclopedia of Insects. Eds: Resh V.H., Cardé R.T. 2nd ed. San Diego, CA, USA: Academic Press; 2009. pp. 798-800.

39. Waldbauer G.P., Friedman S. Self-selection of optimal diets by insects. Annu. Rev. Entomol. 1991;36:43-63. https://doi.org/10.1146/annurev.en.36.010191.000355

40. Moran N., Hamilton W.D. Low nutritive quality as a defence against herbivores. J. Theor. Biol. 1980;86(2):247-254. https://doi.org/10.1016/0022-5193(80)90004-1

41. Lundberg P., Astrom M. Low nutritive quality as a defense against optimally foraging herbivores. The American Naturalist. 1990;135(4):547-562.

42. Abe T., Higashi M. Cellulose centered perspective on terrestrial community structure. Oikos. 1991;60(1):127-133. https://doi.org/10.2307/3545003

43. Hochuli D.F. The ecology of plant/insect interactions: implications of digestive strategy for feeding by phytophagous insects. Oikos. 1996;75(1):133-141. https://doi.org/10.2307/3546331

44. Choong M.F., Lucas W., Ong J.S.Y., Pereira B., Tan H.T.W., Turner I.M. Leaf fracture-toughness and sclerophylly – their correlations and ecological implications. New Phytologist. 1992;121:597-610. https://doi.org/10.1111/j.1469-8137.1992.tb01131.x

45. Williams W.P., Davis F.M., Buckley P.M., Hedin P.A., Baker G.T., Luthe D.S. Factors associated with resistance to fall armyworm (Lepidoptera: Noctuidae) and southwestern corn borer (Lepidoptera: Crambidae) in corn at different vegetative stages. J. Econ. Ent. 1998;91(6):1471-1480. https://doi.org/10.1093/jee/91.6.1471

46. Sands D.P.A., Brancatini V.A.. A portable penetrometer for measuring leaf toughness in insect herbivory studies. Proc. Ent. Soc. Wash. 1991;93:786-788.

47. Slansky F., Feeny P.P. Stabilization of the rate of nitrogen accumulation by larvae of the cabbage butterfly on wild and cultivated food plants. Ecol. Monogr. 1977; 47:209-228.

48. Simpson S.J., Clissold F.J., Lihoreau M., Ponton F., Wilder,S.M., Raubenheimer D. Recent advances in the integrative nutrition of arthropods. Annu. Rev. Entomol. 2015;60:293-311. https://doi.org/10.1146/annurev-ento-010814-020917

49. Jarau S., Hrncir M. Food Exploitation by Social Insects: Ecological, Behavioral and Theoretical Approaches. Boca Raton, FL, USA: Taylor & Francis Group; 2009. 360 p

50. Kaluza B.F., Wallace H.M., Keller A., Heard T.A., Jeffers B., Drescher N., Blüthgen N., Leonhardt S.D. Generalist social bees maximize diversity intake in plant species-rich and resource-abundant environments. Ecosphere. 2017;8:e01758. https://doi.org/10.1002/ecs2.1758

51. Irwin R.E., Cook D., Richardson L.L., Manson J.S., Gardner D.R. Secondary compounds in floral rewards of toxic rangeland plants: Impacts on pollinators. J. Agric. Food Chem. 2014;62(30):7335-7344. https://doi.org/10.1021/jf500521w

52. Eckhardt M., Haider M., Dorn S., Müller A. Pollen mixing in pollen generalist solitary bees: A possible strategy to complement or mitigate unfavourable pollen properties? J. Anim. Ecol. 2014;83(3):588-597. https://doi.org/10.1111/1365-2656.12168

53. Kaluza B.F., Wallace H.M., Heard T.A., Minden V., Klein A.M., Leonhardt S.D. Social bees are fitter in more biodiverse environments. Scientific Reports. 2018;8(3):12353. https://doi.org/10.1002/ecs2.1758

54. Trinkl M., Kaluza B.F., Wallace H.M., Heard T., Keller A., Leonhardt S.D. Floral species richness correlates with changes in the nutritional quality of larval diets in a stingless bee. Insects. 2020;11(2):125. https://doi.org/10.3390/insects11020125

55. Grund-Mueller N., Ruedenauer F.A., Spaethe J., Leonhardt S.D. Adding amino acids to a sucrose diet is not sufficient to support longevity of adult bumble bees. Insects. 2020;11(4):247. https://doi.org/10.3390/insects11040247

56. Ruedenauer F.A., Raubenheimer D., Kessner-Beierlein D., Grund-Mueller N., Noack L., Spaethe J., Leonhardt S.D. Best be(e) on low fat: Linking nutrient perception, regulation and fitness. Ecol. Lett. 2020;23(3):545-554. https://doi.org/10.1111/ele.13454

57. Vaudo A.D., Patch H.M., Mortensen D.A., Tooker J.F., Grozinger C.M. Macronutrient ratios in pollen shape bumble bee (Bombus impatiens) foraging strategies and floral preferences. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2016;113:e4035-e4042. https://doi.org/10.1073/pnas.1606101113

58. Morimoto J., Lihoreau M. Open data for open questions in comparative nutrition. Insects. 2020;11(4): 236. DOI: 10.3390/insects11040236

59. Crumière A.J.J. Stephenson C.J., Nagel M., Shik J.Z. Using nutritional geometry to explore how social insects navigate nutritional landscapes. Insects. 2020;11(1): 53. DOI: 10.3390/insects11010053

60. Simpson S.J., Raubenheimer D. The central role of the haemolymph in the regulation of nutrient intake in insects. Physiol. Entomol. 1993;18:395-403.

61. Nicholls E., Hempel de Ibarra N. Assessment of pollen rewards by foraging bees. Funct. Ecol. 2017;31(1):76-87. https://doi.org/10.1111/1365-2435.12778

62. Ruedenauer F.A., Leonhardt S.D., Lunau K., Spaethe J. Bumblebees are able to perceive amino acids via chemotactile antennal stimulation. J. Comp. Physiol. A Neuroethol Sens Neural Behav Physiol. 2019;205(3):321-331. https://doi.org/10.1007/s00359-019-01321-9

63. Vaudo A.D., Tooker J.F., Patch H.M., Biddinger D.J., Coccia M., Crone M.K., Fiely M., Francis J.S, Hines H.M., Hodges M., Jackson S.W., Michez, D., Mu J., Russo L., Safari M., Treanore E.D., Vanderplanck M., Yip E., Leonard A.S., Grozinger C.M. Pollen protein: Lipid macronutrient ratios may guide broad patterns of bee species floral preferences. Insects. 2020;11(2):132. https://doi.org/10.3390/insects11020132

64. Cohen A.C. Insect diets: Science and technology. Boca Raton, Florida: CRC Press; 2015. 344 p.

65. Burov V.N., Petrova M.O., Stepanycheva E.A., Chermenskaya T.D., Shchenikova A.V. Plant defense responses of a direct and indirect effect in a tritrophic system. Plant Protection News. 2002;3:69-70. (In Russ.)

66. Slepyana Eh.I. Problems of plant oncology and teratology: proceedings of the 1st National seminar on the problem of pathological neoplasms in plants. Leningrad: Nauka; 1975. 493 p.

67. Vilkova N.A., Nefedova L.I., Frolov A.N. Immunity of seed plants and its phytosanitary value in agroecosystems. Plant protection and quarantine. 2015;8:3-9. (In Russ.) https://www.elibrary.ru/uarjwv

68. Pavlyushin V.A., Vilkova N.A., Sukhoruchenko G.I., Fasulati S.R., Nefedova L.I. Phytosanitary consequences of anthropogenic transformation of agricultural ecosystems. Plant Protection News. 2008;3:3-26. (In Russ.)

69. Vilkova N.A., Sukhoruchenko G.I., Fasulati, S.R. Anthropological factors and microevolution of phytophagous insects in agroecosystems including transgenic potato varieties. Transgenic plants are a new direction in the biological protection of plants. Proceedings of the International Scientific Conference. Krasnodar, 2003. p. 170-179. (In Russ.)

70. Fasulati S.R. Microevolutionary aspects of the influence of potato varieties on the population structure of the Colorado potato beetle. In: Variation of insect pests under the conditions of scientific and technical progress in agriculture: Scientific papers of the All-Soviet Institute of Plant Protection. Leningrad; 1988. 71-84 p. (In Russ.)

71. Burov V.N. Petrova M.O., Selitskaya O.G., Stepanycheva E.A., Chermenskaya T.D., Shamshev I.V. Induced plant resistance to phytophages. Мoscow: Publishing House KMK; 2012. 182 p. (In Russ.) https://www.elibrary.ru/uazocx

72. Shepelev M.A. Agroecology. Kostanai, 2016. 46 p. (In Russ.)

73. Chernyshev V.B. Ecology of insects. Moscow: Lomonosov Moscow State University; 1996. 304 p. (In Russ.)

74. Chernyshev V.B. Ehkologicheskaya zashchita rastenii: Chlenistonogie v agroehkosisteme [Ecological protection of plants: Arthropods in an agroecosystem]. Moscow: Lomonosov Moscow State University; 2001. 136 p. (In Russ.)

75. Chulkina V.A., Toropova E.Yu., Stetsov G.Ya. Epiphytology bases of integrated plant management (IPM) In: Epiphytology (ecological basics of plant protection). Ed: Zhuchenko A.A. Novosibirsk; 1998. 226 p. (In Russ.) https://www.elibrary.ru/jxrhrv

76. Vilkova N.A., Nefedova L.I., Asyakin B.P., Konarev Al.V., Vereshchagina A.B., Ivanova O.V., Razdoburdin V.A., Fasulati S.R., Yusupov T.M. Principles and methods of the identification of group and complex resistance of the main agricultural crops. Saint Petersburg: RASKhN; 2009. 88 p.

77. Bolter C.J. Jongsma M.A. Colorado potato beetles (Leptinotarsa decemlineata) adapt to proteinase inhibitors induced in potato leaves by methyl jasmonate. Journal of Insect Physiology. 1995;41:1071-1078.

78. Baldwin A.J. Further biological observations on Subcoccinella vigintiquatuorpunctata. Entomologist's Monthly Magazine. 1990;126(1516-1519):223-229.

79. Cabrera-Brandt M.A., Contreras E.F., Figueroa C.C. Differences in the detoxification metabolism between two clonal lineages of the aphid Myzus persicae (Sulzer) (Hemiptera:Aphididae) reared on tobacco (Nicotiana tabacum L.). Chilean Journal of Agricultural Research. 2010;70(4):567-575.

80. Ghumare S.S., Mukherjee S.N. Performance of Spodoptera litura Fabricius on different host plants: influence of nitrogen and total phenolics of plants and mid-gut esterase activity of the insect. Indian J. Experiment. Biol. 2003;41(8):895-899.

81. Gil M.A. Insect resistance in tomato (Solanum spp.). Cultivos Tropicales. 2015;36(2):100-110. https://doi.org/10.13140/RG.2.2.34979.04640

82. Musser R.O., Cipollini D.F., Hum-Musser S.M., Williams S.A., Brown J.K., Felton G.W. Evidence that the caterpillar salivary enzyme glucose oxidase provides herbivore offense in solanaceous plants. Archives of Insect Biochemistry and Physiology. 2005;58(2):128-137.

83. Mujica N. Alcázar J., Kroschel J. Interacción del nematode entomopatogénico Heterorhabditis indica (Rhabditida: Heterorhabditidae) y el ectoparasitoide Diglyphus begini (Hymenoptera: Eulophidae) en el control de la mosca minadora Liriomyza huidobrensis (Diptera: Agromyzidae). LV Convencion Nacional de Entomologia, 4-7 November, 2013. La Molina, Lima-Perú.

84. Matsishina N.V., Fisenko P.V., Ermak M.V., Sobko O.A., Volkov D.I., Boginskaya N.G. Traditional Selection Potato Varieties and Their Resistance to the 28-punctata Potato Ladybug Henosepilachna vigintioctomaculata (Coleoptera: Coccinellidae) in the Southern Russian Far East. Indian Journal of Agricultural Research. 2022;56(4):456-462. https://doi.org/10.18805/IJARe.AF-694

85. Matsishina N.V., Ermak M.V., Kim I.V., Fisenko P.V., Sobko O.A., Klykov A,G,, Emel'yanov A,N. Allelochemical Interactions in the Trophic System "Henosepilachna vigintioctomaculata Motschulsky Solanum tuberosum Linneus". Insects. 2023;14(5):459. https://doi.org/10.3390/insects14050459

86. Kondrat'ev M.N., Larikova Yu.S. Allelopathy as a mechanism of interaction plants and plants, plants and insects, plants and microorganisms. Agrarian science. 2019;2:57-61. https://doi.org/10.32634/0869-8155-2019-326-2-57-61 (In Russ.)

87. Jabran K., Mahajan G., Sardana V., Chauhan B. Allelopathy for weed control in agricultural systems. Crop Protection. 2015;72:57-65. https://doi.org/10.1016/j.cropro.2015.03.004

88. Kong C., Xu T., Hu F. Study on interactions among allelochemicals of Ageratum conyzoides. Acta Phytoecologica Sinica. 1998;22(5):403-408.

89. Vorontsova E.S. Describing the methods based on allelopathy and allelochemical compounds in agriculture. Scientific Electronic Journal Meridian. 2020;6(40):261-263. (In Russ.)

90. Inderjit, Wardle D.A., Karban R., Callaway R. The ecosystem and evolutionary contexts of allelopathy. Trends Ecol. Evol. 2011;26(12): 655-662. DOI:10.1016/j.tree.2011.08.003

91. Pickett J.A. Rasmussen H., Woodcock C., Matthest M., Napier J. Plant stress signalling: understanding and exploiting plant-plant interactions. Biochem. Soc. Trans. 2003;31(1):123-127. https://doi.org/10.1042/bst0310123

92. Konaryov A.V. Molecular aspects of plant immunity and their coevolution with insects. Biosfera. 2017;9(1):79-99. https://doi.org/10.24855/biosfera.v9i1.325 (In Russ.)

93. Vasil'ev A.G., Vasil'eva I.A. Epigenetic changes in a population as a probable mechanism of an ecosystemic crisis. Vestnik of Lobachevsky University of Nizhni Novgorod. Biology. 2005;1:27-38. (In Russ.)


Рецензия

Для цитирования:


Мацишина Н.В., Собко О.А., Ермак М.В. Пища как фактор, определяющий физиологическое состояние популяций фитофагов-вредителей сельскохозяйственных культур. Овощи России. 2024;(5):84-90. https://doi.org/10.18619/2072-9146-2024-5-84-90

For citation:


Matsishina N.V., Sobko O.A., Ermak M.V. Food as a factor determining the physiological state of populations of the phytopagous pests of agricultural crops. Vegetable crops of Russia. 2024;(5):84-90. https://doi.org/10.18619/2072-9146-2024-5-84-90

Просмотров: 151


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2072-9146 (Print)
ISSN 2618-7132 (Online)