Определение устойчивости фасоли к антракнозу в условиях естественного инфекционного фона и методом молекулярно-генетического маркирования

Актуальность. В настоящее время в ассортимент овощных культур прочно вошла фасоль овощная, белок которой усваивается человеческим организмом до 87% и выше. Основным фактором, ограничивающим выращивание фасоли в условиях Беларуси, является отсутствие сортов данной культуры, устойчивых к микологическим заболеваниям, в первую очередь, к антракнозу.

Материалы и методы. В исследования были включены 34 образца фасоли овощной мутантного и гибридного происхождения, полученные в секторе бобовых овощных культур РУП «Институт овощеводства НАН Беларуси». Для получения мутагенного эффекта использовали индуцированный мутагенез в виде действия радиоактивного изотопа 60Со и неодимового лазера. Гибридные комбинации получали путем внутривидовой гибридизации мутантных образцов. Для молекулярного тестирования генома ДНК выделяли из листьев растений до цветения, ее очистку проводили по методике фирмы Fermentas, набором Genomic DNA Purification Kit. Концентрацию полученного раствора ДНК определяли спектрофотометрическим методом на приборе CARY 50 SCAN. Для проведения ПЦР использовали амплификатор Thermo Hybaid Rx2. Температуру отжига праймеров определяли с помощью программы «олигокалькулятор». В качестве маркера выступил праймер CV2014, устойчивые генотипы к Colletotrichum lindemuthianum Br. et Cav были на уровне бэндов размером около 450 п.н. Фитопатологическая оценка поражаемости растений основывалась на визуальных и инструментальных способах учёта реакции растений, и интенсивности поражения, в условиях естественного инфекционного фона в фазу технической спелости.

Результаты. Выделены семь образцов фасоли, имеющие генетическую устойчивость к антракнозу и проявившие ее в условиях естественного инфекционного фона. 

1. Темиров, К.С. и др. Урожайность и биохимические показатели селекционных линий гороха посевного различного морфотипа. Растениеводство и селекция. 2016;(5):21-27.

2. Пашкевич, А.М. и др. Оценка коллекционных сортообразцов фасоли овощной по хозяйственным и биолого-морфологическим признакам. Овощеводство: сборник научных статей. Самохваловичи, 2015;(23):139-143.

3. Jones, A.L. Phaseolus bean: Post-harvest operations. Organisation: Centro Internacional de Agricultura Tropical (CIAT). Edited by AGSI/FAO. [Электронный ресурс]. – Режим доступа: http: // www.fao.org/3/aav015e.pdf. – Дата доступа: 02.02.2016.

4. Djeugap, F.J. et al. Effet variétal et du traitement fongicide sur la sévérité de la maladie des taches angulaires et le rendement du haricot commun (Phaseolus vulgaris L.) à l'Ouest-Cameroun. International Journal of Biological and Chemical Sciences. 2014;8(3):1221-1233.

5. Dutartre, M. Santé et adaptation du haricot commun Phaseolus vulgaris L. Mémoire de fin d’études pour l’obtention du diplôm d’Ingénieur Aronome. Paris, 2015. 70 p.

6. Yu, K. et al. Integration of Simple Sequense Repeat (SSR) Markers into a Molecular Linkage Map of Common Bean (Phaseolus vulgaris L.). The Journal of Heredity. 2000;(91):429-434.

7. Goncalves-Vidigal, M.C. et al. Linkage mapping of the Phg-1 and Co-14 genes for resistance to angular leaf spot and anthracnose in the common bean cultivar AND277. Theor. Appl. Genet. 2011;(122):893-903.